VALIDACIÓN DE UNA TÉCNICA DE DUPLEX PCR PARA LA DETECCIÓN DE C. perfringens EN
ALIMENTOS

Hostench, M. C.; Olmedo, M.; De Andrade Cattapan, R.; Monzón, C.; Vivas, L.; Batista, L.; Alvarez, M.
INTI Agroalimentos
hostench@inti.gob.ar


OBJETIVO

Los objetivos de este trabajo fueron: i) validar
una técnica de dúplexa PCR (Polimerase Chain
Reaction) para la detección de C.perfringens
productor de enterotoxina; ii) identificar aislados
enterotoxigénicos de C.perfringens y iii)
comparar distintos métodos de extracción de
ADN a partir de alimentos.


a
La dúplex PCR es una PCR en donde se utilizan dos
pares de primers para amplificar dos regiones distintas del
genoma.

DESCRIPCIÓN

El Clostridium perfringens es una bacteria
formadora de esporas, anaerobia y ubicua que
produce Enfermedades Transmitidas por
Alimentos (ETA). Las cepas son clasificadas en
5 biotipos (A a E) basados en su habilidad
para producir 4 toxinas principales: alfa (α-),
beta (β -), épsilon (ε -) e iota (ι -) (1). La α-
toxina es producida por todos los tipos de
cepas y es codificada por el gen cpa, por lo que
es éste gen el que se utiliza para la
determinación de C. perfringens. Existen otras
toxinas producidas por algunas cepas de
C. perfringens, entre ellas la enterotoxina
(CPE), la cual es codificada por el gen cpe y
producida por el tipo A. Son las cepas
productoras de enterotoxina las causantes de
los brotes, ya que es la enterotoxina el factor
de virulencia que causa la enfermedad (2). Los
síntomas que predominan son: diarrea y dolor
abdominal, que aparecen entre las 6 y las 24 h
posteriores a la ingestión del alimento
contaminado.
A diferencia de las otras toxinas, la CPE solo
es producida durante la esporulación, y la
bacteria esporula pobremente en los medios
usuales de cultivo, complicando la identificación
de cepas enterotoxigénicas basadas en la
detección de CPE por métodos
inmunoenzimáticos. Por otro lado, al tratarse de
un microorganismo anaerobio estricto, su
cultivo es dificultoso. La detección de
C. perfringens por la técnica de PCR permite
obtener resultados rápidamente evitando el
tiempo que conlleva el aislamiento y la
esporulación.


Materiales y métodos

Todas las muestras fueron analizadas por el
método tradicional (FDA-BAM, Compendium of
Analytical Methods Canada MFHPB-23 Ed.
1992) y el método de PCR.

Cultivo e Identificación de C.perfringens: Se
sembraron 10 g de distintos alimentos (sopas
deshidratadas, gelatina, pan dulce, proteína de
soja) en 90 ml de caldo tioglicolato. Se incubó
24 h a 35 °C bajo condiciones anaerobias. Se
sembró en agar TSC (triptosa-sulfito-
cicloserina) con yema de huevo. Las colonias
características fueron aisladas e identificados
por pruebas bioquímicas: tinción de Gram,
producción de lecitinasa, producción de ácido
sulfhídrico, crecimiento a 45ºC, movilidad,
reducción de nitrato, licuefacción de gelatina,
producción de gas a partir de la lactosa.

Cepas: Se utilizaron 12 cepas de C.perfringens
aisladas por el laboratorio a partir de alimentos
y como cepas de referencia el C. perfringens
ATCC 13124 y C. perfringens BE 305/09.

Aislamiento de ADN: i) Para la extracción de
ADN a partir de la cepa pura las cepas de
C. perfringens se hicieron crecer en placas de
agar cerebro corazón (BHA) bajo condiciones
anaerobias a 35 °C por 24 h. Se
resuspendieron algunas colonias en 200 µl de
agua tridestilada y se calentó a 100 °C durante
20 minutos. Se centrifugaron los microtubos
durante 15 min a 12 000 rpm y el sobrenadante
fue utilizado como templado de la PCR.

ii) Para la extracción de ADN bacteriano a partir
del alimento se realizó un enriquecimiento de
10 g del alimento en 90 ml de caldo tioglicolato.
Se incubó 24 h a 35°C bajo condiciones
anaerobias. Se extrajo el ADN bacteriano de
tres maneras distintas: 1) técnica del
laboratorio basada en la técnica utilizada para
la extracción de ADN a partir de la cepa pura,
2) kit comercial de extracción Nucleo Spin®
Food (Macherey- Nagel) y 3) kit comercial de
extracción SureFood ® PREP Allergen (R-
Biopharm).

Amplificación: Para la duplex PCR se amplificó
el gen cpa y el gen cpe según lo descripto por

Meer and Songer 1997 (3). Las condiciones del
ciclado fueron 94 °C 1 min, 30 ciclos de 94 °C 1
min, 55 °C 1 min y 72 °C 1 min con una
extensión final de 72 °C 5 min. Los productos
de la PCR fueron separados en un gel de
agarosa al 2% (100V, 40 min) y observados
bajo un transiluminador UV.

Especificidad de la PCR: La especificidad de la
PCR fue testeada utilizando otras especies de
Clostridium: C.sordellii ATCC 9714, C.
sporogenes ATCC 3584, C.sporogenes CICAA.
B007, C.paraperfingens. También fueron
testeadas otras bacterias frecuentemente
asociadas con ETA: Escherichia coli ATCC
25922 y Salmonella enterica ATCC 7378.

RESULTADOS

Duplex PCR:
Se realizó una dúplex PCR para la detección
del gen de la α-toxina (cpa) y de la enterotoxina
(cpe), obteniendose un producto de 324 bp y
233 bp respectivamente.
Los productos de PCR fueron claramente
visibles y fácilmente distinguibles uno de otro
(Fig.1)



Figura 1: Calles superiores: 1) C.perfringens BE 305/09, 2)
C.perfringens ATCC 13124, 3) C.perfringens aislado de
gelatina, 4) C.perfringens aislado de proteína de soja, 5)
Marker, 6) C.perfringens aislado de sopa deshidratada de
arvejas, 7) C. sordellii ATCC 9714, 8) C.perfringens aislado
de sopa deshidratada de espinaca, 9) Control negativo
Salmonella 10) Control de reactivos. Calles inferiores: 1)
C.perfringens aislado de pan dulce , 2) C.perfringens
aislado de gelatina, 3) C.perfringens aislado de sopa
deshidratada de zapallo, 4) C. sporogenes ATCC 3584, 5)
Marker, 6) Sopa deshidratada de arvejas utilizando kit R-
biopharm 7) Sopa deshidratada utilizando la técnica del
laboratorio para la extracción de ADN 8) Sopa deshidratada
de arvejas utilizando kit Macherey-Nagel, 9) Sopa
deshidratada de zapallo utilizando kit Macherey-Nagel 10)
Sopa deshidratada de zapallo utilizando kit R-biopharm.
Un total de 12 cepas de C. perfringens se
obtuvieron a partir de distintos alimentos
utilizando el método tradicional para
investigación de C. perfringens. Las 12 cepas
fueron analizadas por PCR mostrando la
amplificación del gen estructural de la α- toxina
(cpa), lo que confirma que se trata de
C.perfringens y sólo en 3 cepas fue detectado
el gen cpe, lo que determina que tienen la
capacidad de producir enterotoxina.
Ninguna de las otras especies de Clostridium ni
las Enterobacterias testeadas produjeron el
fragmento de 324pb, lo que indica que el
método de PCR validado es específico para
C.perfringens.

Extracción de ADN:
En cuanto a la extracción de ADN bacteriano a
partir del alimento se obtuvieron resultados
exitosos utilizando ambos kits comerciales,
pero, a pesar de ser una técnica más sencilla y
económica, no fue posible extraer el ADN
utilizando la técnica del laboratorio, debido a
los interferentes presentes en los alimentos.

CONCLUSIONES

Se observó que la duplex PCR es un método
rápido, confiable y específico para la detección
de C. perfringens y es capaz de discriminar
cepas potencialmente enterotoxigénicas.

El aislamiento directo de ADN a partir de la
célula vegetativa de C. perfringens elimina la
necesidad de fomentar la esporulación en
orden de obtener la toxina en cantidades
suficientes para la detección por métodos
inmunoenzimáticos. Además la capacidad de
esporular in vitro puede variar con diferentes
medios de cultivo, por lo que la PCR demuestra
ser un método rápido y adecuado para la
detección de la enterotoxina.

BIBLOGRAFIA

(1) Garmory, H. S., Chanter, N., French, N. P.,
Bueschel, D., Songer, J. G. & Titball, R. W.
(2000). Ocurrence of Clostridium perfringens
β2-toxin amongst animals, determined using
genotyping and subtyping PCR assays.
Epidemiol. Infect., 124, 61-67.
(2) Schoepe, H., Potschka, H., Schlapp, T.,
Fiedler, J., Schau, H. & Baljer, G. (1998).
Controlled multiplex PCR of enterotoxigenis
Clostridium perfringens strains in food samples.
Molecular and Cellular Probes, 12, 359-365.
(3) Meer, R. R., Songer, J. G. (1997). Multiplex
polymerase chain reaction assay for genotyping
Clostridium perfringens. Am. J. vet. Res., 58:
702-705.
Gen cpa 324 pb Gen cpe 233 pb
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10